作者: 时间:2022-06-20
经过多年的发展,MW显微镜载物台相关的论文文献已经有数百篇之多,比如前几篇文章介绍的化学领域,生物领域,传感器领域,细胞领域,微型机器领域等等,这篇文章简单介绍了一下MW显微镜电动平台在自然化学产物,植物动作电位研究,生态学研究应用中的MW显微镜载物台论文和MW显微镜载物台文献。
Marzhauser显微镜电动平台在自然化学产物研究中的应用
MDPI的一篇文章报道了MarzhauserWetzlar显微镜电动平台在自然化学产物研究中的应用,文章名为Giannotti, K.C.; Weinert, S.; Viana, M.N.; Leiguez, E.; Araujo, T.L.S.; Laurindo, F.R.M.; Lomonte, B.; Braun -Dullaeus, R.; Teixeira, C. A Secreted Phospholipase A2 Induces Formation of Smooth Muscle Foam Cells Which Transdifferentiate to Macrophage-Like State. Molecules 2019, 24, 3244.
马格德堡大学(Otto-von-Guericke-Universität Magdeburg)发表的这篇文章的中文标题可以翻译为:发表的这篇文章的中文标题可以翻译为:分泌的磷脂酶A2诱导平滑肌泡沫细胞的形成,这些细胞可转分化为巨噬细胞样状态。载有脂滴(LD)的血管平滑肌细胞(VSMC)是动脉粥样硬化的标志物。在这种疾病中,炎症性IIA组分泌的磷脂酶A2s(GIIAsPLA2s)在VSMC中高度表达,但它们在这些细胞中的作用尚不清楚。在这里,我们研究了myotoxinIII(MT-III)的能力,一种与哺乳动GIIAsPLA2s共享结构和功能特征的蛇虫GIIAsPLA2诱导LD形成和参与这种效应的脂质代谢因子的能力。此sPLA对VSMC表型的调节也被评价了。用MT-III孵育VSMC显着增加了LD的数量。MT-III上调1型清道夫受体(SR-A1)和凝集素样氧化低密度脂蛋白受体1(LOX-1)蛋白表达并增强VSMCs对乙酰化低密度脂蛋白(acLDL)的摄取,揭示了GIIAPLA2调节清道夫受体活性。MT-III诱导PPAR-γ和-β/δ的易位和蛋白质表达。抑制过氧化物酶体增殖物激活受体(PPAR)和二酰基甘油O-酰基转移酶(DGAT)和酰基辅酶A:胆固醇酰基转移酶(ACAT)酶消除了MT-III诱导的LD形成。此外,响应MT-III,VSMC获得吞噬活性并表达巨噬细胞标志物CD68和MAC-2。总之,MT-III能够刺激VSMC并募集参与脂质摄取和代谢的因子,从而形成具有巨噬细胞样标志物和功能的VSMC衍生泡沫细胞。
以每cm210,000个细胞的密度接种大鼠VSMC在玻璃底24孔板(Zell-KontaktGmbH, Nörten-Hardenberg, Germany)上,在补充有10%胎牛血清(Gibco/LifeTechnologies/ThermoFisherScientific;)的低葡萄糖DMEM中培养过夜SV30079.01通用电气)。24小时后,细胞在DMEM低葡萄糖中饥饿48小时,并用MT-III(0.4或0.8µM)刺激12小时。刺激后,用DMEM低葡萄糖洗涤细胞3次,并在补充有10%FCS的DMEM低葡萄糖中暴露于1.5µg/mL Alexa Fluor488标记的acLDL (ThermoFisher Scientific)24小时。然后用新鲜制备的3%甲醛溶液固定细胞10分钟。接下来,将细胞洗涤3次以去除非内化的acLDL,并用Hoechst33342(10 µg/mL ThermoFisher Scientific)染色。60分钟后,使用配备MW显微镜载物台(Märzhäuser Wetzlar GmbH and Co. KG, Wetzlar, Germany)、Colibri2 (Carl Zeiss, Jena, Germany) 和过滤器组62HE。使用代表1000×1000µm样品的Neofluar40x/0.75获取具有6×8单幅图像的马赛克图像。图像被拼接并导出为Tiff文件。图像被缩小到50%,得到4000×4000像素的图像。使用Apotome2和Axiovert200m的Neofluar40x/1.3创建代表区域的高分辨率光学切片图像。堆栈在ImageJ中处理并显示为最大强度投影。德国)配备MW显微镜载物台(Märzhäuser Wetzlar GmbHandCo.KG,Wetzlar,Germany)、Colibri2(CarlZeiss,Jena,Germany)和滤光片组62HE。使用代表1000×1000µm样品的Neofluar40x/0.75获取具有6×8单幅图像的马赛克图像。图像被拼接并导出为Tiff文件。图像被缩小到50%,得到4000×4000像素的图像。使用Apotome2和Axiovert200m的Neofluar40x/1.3创建代表区域的高分辨率光学切片图像。堆栈在ImageJ中处理并显示为最大强度投影。德国)配备电动载物台(Märzhäuser Wetzlar GmbHandCo. KG,Wetzlar,Germany)、Colibri2(Carl Zeiss,Jena,Germany)和滤光片组62HE。使用代表1000×1000µm样品的Neofluar40x/0.75获取具有6×8单幅图像的马赛克图像。图像被拼接并导出为Tiff文件。图像被缩小到50%,得到4000×4000像素的图像。使用Apotome2和Axiovert200m的Neofluar40x/1.3创建代表区域的高分辨率光学切片图像。堆栈在ImageJ中处理并显示为最大强度投影。75代表1000×1000µm的样品。图像被拼接并导出为Tiff文件。图像被缩小到50%,得到4000×4000像素的图像。使用Apotome2和Axiovert200m的Neofluar40x/1.3创建代表区域的高分辨率光学切片图像。堆栈在ImageJ中处理并显示为最大强度投影。75代表1000×1000µm的样品。图像被拼接并导出为Tiff文件。图像被缩小到50%,得到4000×4000像素的图像。使用Apotome2和Axiovert200m的Neofluar40x/1.3创建代表区域的高分辨率光学切片图像。堆栈在ImageJ中处理并显示为最大强度投影。
MW显微镜电动平台在植物动作电位研究中的应用
MDPI的一篇文章报道了MW显微镜电动平台在植物动作电位研究中的应用,文章名为Koselski,M.;Pupkis, V.; Hashimoto, K.; Lapeikaite, I.; Hanaka, A.; Wasko, P.; Plukaite, E.; Kuchitsu, K.; Kisnieriene, V.; Trebacz, K. Impact of Mammalian Two-Pore Channel Inhibitors on Long-Distance Electrical Signals in the Characean Macroalga Nitellopsis obtusa and the Early Terrestrial Liverwort Marchantia polymorpha. Plants 2021, 10, 647.
玛丽亚•斯克沃多夫斯卡-居里大学(Maria Curie-Sklodowska University)发表的这篇文章的中文标题可以翻译为:哺乳动物双孔通道抑制剂对长距离电信号的影响Characean Macroalga Nitellopsis obtusa和早期陆生地钱 Marchantia polymorpha。人双孔通道(TPC1和TPC2)抑制剂维拉帕米、防防己碱和NED-19是治疗严重疾病的有前途的药物。在本研究中,这些物质对动作电位 (APs)和液泡通道活性的影响在水生characean藻类Nitellop sisobtusa和陆生地钱Marchantia polymorpha中进行了检查。在这两种植物中,维拉帕米(20–300µM)导致AP振幅降低,表明Ca2+转运受损。在N.obtusa中,它使AP激发阈值和静息电位去极化并延长AP持续时间。在M.polymorpha的孤立液泡中,维拉帕米降低了慢液泡SV/TPC通道的开放概率,但对圆角猪笼草液泡中的K+通道几乎没有影响。在这两个物种中,汉防己碱(20–100µM)引起了多效性:静息电位和AP振幅的降低以及AP复极化阶段的延长,特别是在M.polymorpha中,但它并没有改变液泡SV/TPC的活性。NED-19(75µM)对N.obtusaAPs产生特异性和非特异性影响。在M.polymorpha中,NED-19增加了复极化的持续时间。然而,在Marchantia中没有观察到对SV/TPC通道的抑制液泡,但增加了开放概率和通道闪烁。结果表明对控制植物激发的Ca2+渗透通道的影响。
Marchantia的电诱发动作电位用微电极法记录。微电极由硼硅酸盐玻璃管(WPI, Sarasota, FL, USA) 制备,由 P-30微电极拉拔器(Sutter Instrument Co., Novato, CA, USA) 拉出并填充100mMKCl。填充有100mMKCl的Ag/AgCl参比电极通过多孔尖端与浴液接触。电极连接到放大器FD223(WPI,Sarasota,FL,USA)。实验在放置在抗振台(TMC Amatek Ultra Precision Technologies,Peabody,MA,USA)上的法拉第笼内进行。数据由Lab-Trax-4设备收集,并由LabScribe3软件(WPI,Sarasota,FL,USA)在PC硬盘驱动器上注册。采样率为5Hz。使用Marzhauser显微镜电动平台MärzhäuserDC-3K(Märzhäuser Wetzlar GmbH&Co.,)。
MW显微镜自动平台在木材科学与热带森林生态学研究中的应用
MDPI的一篇文章报道了MW显微镜自动平台在木材科学与热带森林生态学研究中的应用,文章名为De Mil, T.; Tarelkin, Y.; Hahn, S.; Hubau, W.; Deklerck, V.; Debeir, O.; Van Acker, J.; De Cannière, C.; Beeckman, H.; Van den Bulcke, J. Wood Density Profiles and Their Corresponding Tissue Fractions in Tropical Angiosperm Trees. Forests 2018, 9, 763.
布鲁塞尔自由大学(VUB-Vrije Universiteit Brussel)发表的这篇文章的中文标题可以翻译为:热带被子植物的木材密度分布及其相应的组织分数。木材密度剖面揭示了树木的生命策略和生长。然而,密度分布很少根据热带被子植物木材的组织分数来定义。在这里,我们旨在将这些部分与刚果盆地热带树木的相应密度分布联系起来。用X射线计算机断层扫描对8个树种的核心进行扫描,以计算密度分布。然后,用ImageJ中的Weka分割工具对核心进行打磨,并使用最外面的3cm半自动测量血管腔、实质和纤维分数。使用新开发的半自动方法测量纤维壁和管腔宽度。对年轮边界检测功能中的密度变化进行了评估。混合回归模型估计了每个性状对密度的相对贡献,对回归的斜率和截距有物种影响。在分数和相应的木材密度分布之间进行位置相关的相关性。平均而言,密度分布变化主要反映了纤维管腔和壁分数的变化,但这些变化取决于物种和位置:在某些位置,实质和血管对密度的影响更为显着。将密度与性状联系起来的模型解释了92%的变异,其中65%的密度分布变异归因于三个测量的性状。剩下的27%被物种解释为随机效应。树木之间和树木内部存在明显的差异,这对解释被子植物树的密度分布有影响:每个密度值背后的确切驱动解剖分数将取决于核心内的位置。因此,密度的基本函数将相应变化。
将芯胶粘在木制样品架中,并用越来越细的砂纸(粒度80-1200)打磨其横向表面。外部木材的最后三厘米(直到形成层区域)在Marzhauser显微镜电动平台(SCAN100×100,Märzhäuser Wetzlar,德国)上用相机(3.2MP,2048×1536像素)成像(StreamMotion,Olympus,日本);UC30,奥林巴斯(东京,日本))安装在反射光显微镜(BX60,奥林巴斯,放大倍数×10)上。最终图像由使用多图像对齐算法(Olympus)缝合在一起的重叠图像组成。然后使用这些图像来测量不同解剖部分(血管腔、轴向和射线薄壁组织、纤维)的部分。对于纤维部分,还测量了局部纤维壁部分(纤维壁/总细胞大小的比率)。